تقييم التأثيرات المضادة للبكتيريا لمستخلصات الكافور (Eucalyptus camaldulensis L.) ضد بعض البكتيريا الممرضة في المختبر والمركبات الفينولية بواسطة تقنية كروماتوغرافيا السائل عالي الأداء - كاشف المصفوفة الثنائية (HPLC-DAD)

القسم: Article
إصدار
مجلد 22 عدد 2 (2026): المجلد (22) العدد (2) لسنة 2026
الصفحات
223-242

الملخص

أُجريت هذه الدراسة في مختبر جامعة النور – العراق في عام (2025) لتحديد المركبات النشطة ومعرفة درجة تثبيطها للبكتريا المرضية، والتي شملت تأثير مستخلصي الهكسان والمائي بثلاث تراكيز على نوعين من البكتيريا، والمركبات الفينولية في شجرة (اليوكاليبتوس) نوع الكامالدولينسيس (Eucalyptus camaldulensis). تم تحضير المستخلص لفصل ومعرفة المركبات الكيميائية النشطة باستخدام جهاز سوكسليت والمذيبين الهكسان والماء. واستخدمت تقنية الاستشراب السائل عالي الأداء (HPLC) لتحديد المركبات الكيميائية الفعالة في المستخلص. وأظهرت النتائج وجود 5 مركبات فينولية، وهي: الكيرسيتين، الكامبفيرول، الفيروليك، حمض الجاليك، الروتين يمكن أن تُستخدم هذه الاختلافات في المركبات الكيميائية كمؤشر مهم لتحديد هوية النبات. تضمن الجانب الثاني من البحث تقييم التأثير التثبيطي باستخدام مذيبين عضويين كمستخلصات على نوعين من البكتيريا (المكورة العنقودية الذهبية، الإشريكية القولونية)، وأظهر البحث اختلافًا في معدلات التثبيط اعتمادًا على المذيبات العضوية. أظهرت فعالية تثبيطية في المختبر لمستخلصات الكينا الكامالدولينسيس درجات متفاوتة من التثبيط بتراكيز مختلفة، حيث اختلفت في انواع البكتيريا الموجبة والسالبة لصبغة غرام.

الكلمات المفتاحية:

مستخلصات نباتية، مضاد للبكتيريا، اليوكاليبتوس الكامالدولينسيس، المكورة العنقودية الذهبية، الإشريكية القولونية، البكتيريا الممرضة، المركبات الفينولية

المراجع

  1. AL-CHAABAWI, H.M. and SATMBEKOVA, D.K., 2023. Obtaining and Research of methanolic extract from eucalyptus plant. Journal of Survey in Fisheries Sciences, vol. 10, no. 3S, pp. 3329-3336.
  2. Al-Jubouri, Sabiha Hussein Ahmed (2007). Physicochemical study of pentosanate extracts Al-Snafi AE. Traditional uses of Iraqi medicinal plants. IOSR J Pharm. 2018;8(8):32–96. [Google Scholar]
  3. Attallah NG, Negm WA, Elekhnawy E, Elmongy EI, Altwaijry N, El-Haroun H, El-Masry TA, El-Sherbeni SA. Elucidation of phytochemical content of Cupressus macrocarpa leaves: in vitro and in vivo antibacterial effect against methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical isolates. Antibiotics. 2021 Aug;10(8):890.
  4. Babayi, H.; Kolo, I.; Okogun, J.I. and Ijah, U.J.J. (2004).The Antimicrobial Activities of Methanolic Extracts of Eucalyptus camaldulensis and Terminalia catappaAgainst Some Pathogenic Microorganisms.Biokem., 16(2):106-111.
  5. Bachir, R.G.; Benali, M. Antibacterial Activity of the Essential Oils from the Leaves of Eucalyptus Globulus against Escherichia Coli and Staphylococcus aureus. Asian Pac. J. Trop. Biomed. 2012, 2, 739–742. [CrossRef
  6. Balogun M, et al. A review of Piper guineense (African Black Pepper) Ijppr n Huma 2016;6(1):368–384. [Google Scholar]
  7. Bauer, A.W., 1966. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disc method. Am. J. Clin. Patho., 45, 149-158.
  8. Benabdesslem, Y., Hachem, K., Me´barki, M., 2020. Chemical composition of the essen- tial oil from the leaves of Eucalyptus globulus Labill. Growing in southwest Algeria. Journal of Essential Oil-Bearing Plants 23, 1154–1160.
  9. Bernabé-Antonio, A., L. Álvarez, E. Salcedo-Pérez, F.L.D. Toral,J. Anzaldo-Hernándezand and F. Cruz-Sosa. 2015. Fatty acid profile of intact plants of two different sites and callus cultures derived from seed and leaf explants of CalophyllumbrasilienseCambess: A new resource of non- edible oil. Ind. Crops Prod., 77: 1014-1019
  10. Cheesbrough M. Medical Laboratory Manual for Tropical Countries. Oxford, United Kingdom: Oxford, Publishers; 1984. Microscopic examination of specimens; pp. 32–33. [Google Scholar]
  11. Cheesbrough M. Medical Laboratory Manual for Tropical Countries. Oxford, United Kingdom: Oxford, Publishers; 1984. Microscopic examination of specimens; pp. 32–33. [Google Scholar]
  12. Cruz MC, Santos PO, Barbosa Jr AM, de Mélo DL, Alviano CS, Antoniolli AR, Alviano DS, Trindade RC. Antifungal activity of Brazilian medicinal plants involved in popular treatment of mycoses. J Ethnopharmacol. 2007 May 4;111(2):409–412.
  13. D. R. Batish, H. P. Singh, N. Setia, S. Kaur and R. K. Kohli; Phytotoxicity.; 2006, 61, 465–470.
  14. D. W. Reische, D. A. Lillard and R. R. Eitenmiller; Antioxidants in food lipids. In Chemistry Nutrition and Biotechnology; Ahoh, C.C., Min, D.B., Eds.; Marcel Dekker: New York, NY, USA, 1998; Volume 1, pp. 423-448.
  15. Dahiya P, Purkayastha S. Phytochemical Screening and Antimicrobial Activity of Some Medicinal Plants Against Multi-drug Resistant Bacteria from Clinical Isolates. Indian J Pharm Sci. 2012 Sep;74(5):443-50. doi: 10.4103/0250-474X.108420. Erratum in: Indian J Pharm Sci. 2012 Nov;74(6):563.
  16. Elansary, H.O., Salem, M.Z.M., Ashmawy, N.A., Yessoufou, K., El-Settawy, A.A.A., 2017. In vitro antibacterial, antifungal and antioxidant activities of Eucalyptus spp. leaf extracts related to phenolic composition. Natural Product Research 31, 2927–2930.
  17. Famurewa A, et al. Abrogation of hepatic damage induced by anticancer drug methotrexate by Zobo (Hibiscus sabdariffa extract) supplementation via targeting oxidative hepatotoxicity in rats. Journal of Dietary Supplements. 2018;10:1456502. doi: 10.1080/19390211.2018.1456502. [DOI] [PubMed] [Google Scholar
  18. G. Sacchetti, S. Maietti, M. Muzzoli, M. Scaglianti, S. Manfredini, M. Radice and R. Bruni; Comparative evaluation of 11 essential oils of different origin as functional antioxidants antiradicals and antimicrobials in foods; Food Chem.; 2005, 91, 621–632.
  19. Ghaffar, A., M. Yameen, S. Kiran, S. Kamal, F. Jalal, B. Munir and A. Jabbar. 2015. Chemical composition and In vitro evaluation of the antimicrobial and antioxidant activities of essential oils extracted from seven Eucalyptus species. Molecules, 20(11): 20487-20498.
  20. Ivanov, M., Kannan, A., Stojkovic, D.S., Glamoclija, J., Calhelha, R.C., Ferreira, I.C.F.R., Sanglard, D., Sokovic, M., 2021. Camphor and eucalyptol-anticandidal spectrum, antivirulence effect, efflux pumps interference and cytotoxicity. International Jour- nal of Molecular Sciences 22, 1–14.
  21. J. A. Duke; The Green Pharmacy; Rodale Press: Emmaus, PA, USA, 1997; pp. 140–255.
  22. J. S. Hur, S.Y. Ahn, Y. J. Koh and C. Lee; Antimicrobial properties of cold-tolerant Eucalyptus species against phytopathogenic fungi and food-borne bacterial pathogens; Plant Pathol. J.; 2000, 16, 286-289.
  23. K. Husnu, C. Baser and F. Demirci; Chemistry of essential oils; Flavour Fragr. J.; 2007, 5, 43–86.
  24. K.P. Svoboda and S.G. Deans; Biological activities of essential oils from selected aromatic plants; Acta Hortic.; 1998, 39, 203–209.
  25. Laghari, M.H., J. Mangi, M. Gorar, S. Sohu, A. Hayat, S. Zahid, F.A. Khatri, K.A. Gishkori, M.Y. Seelro, A. Qureshi, S.A. Soomro and A.R. Sidhu. 2023. Identification and quantification of phenolic compounds by HPLC-DAD and antioxidant activity from Cordia gharaf Plant. J. Appl. Res. Plant Sci., 4(02): 653-661.
  26. Luis, A., N. Gil, M.E. Amaral and A.P. Duarte. 2012. Antioxidant activities of extracts from Acacia melanoxylon, Acacia dealbata and Olea europaea and alkaloids estimation. Int. J. Pharm. Pharm. Sci., 4(1): 225-231
  27. M. Ekor; The growing use of herbal medicines: issues relating to adverse reactions and challenges in monitoring safety.; Front Pharmacol.; 2014, 4,177.
  28. M. H. H. Roby, M. A. Sarhan, K. A. H. Selim and K.I. Khalel; Evaluation of antioxidant activity total phenols and phenolic compounds in thyme (Thymus vulgaris L.) sage (Salvia officinalis L.) and marjoram (Origanum majorana L.) extracts; Ind. Crops Prod.; 2002, 43, 827–831.
  29. Maurya, A. and S.K. Srivastava. 2012. Determination of ursolic acid and ursolic acid lactone in the leaves of Eucalyptus tereticornis by HPLC. J. Braz. Chem. Soc., 23: 468-472
  30. Medicinal plants have a long history in the treatment of vari- ous ailments and diseases especially infectious diseases due to their therapeutic benefits (Saad et al. 2017) Mossalem
  31. Memon, A.A., N. Memon, D.L. Luthria, M.I. Bhanger and A.A. Pitafi. 2010. Phenolic acids profiling and antioxidant potential of mulberry (Morus laevigata W., Morus nigra L., Morus alba L.) leaves and fruits grown in Pakistan. Pol. J. Food Nutr. Sci., 60(1): 25-32.
  32. Memon, S., A.A. Chandio, A.A. Memon, Q.K. Panhwar, S.M. Nizamani, A.A. Bhatti and N.A. Brohi. 2017. Synthesis, characterization, and exploration of antimicrobial activity of copper complex of diamide derivative of p-tert-butylcalix arene. Polycycl. Aromat. Compd., 37(5): 362-374.
  33. Memon, S., A.A. Chandio, A.A. Memon, Q.K. Panhwar, S.M. Nizamani, A.A. Bhatti and N.A. Brohi. 2017. Synthesis, characterization, and exploration of antimicrobial activity of copper complex of diamide derivative of p-tert-butylcalix arene. Polycycl. Aromat. Compd., 37(5): 362-374.
  34. Nascimento, Gislene G. F.; Locatelli, Juliana; Freitas, Paulo C.; Silva, Giuliana L. (2000). Antibacterial activity of plant extracts and phytochemicals on antibiotic-resistant bacteria. Brazilian Journal of Microbiology, 31(4), –. doi:10.1590/S1517-83822000000400003
  35. P. J. Quinn, M. E. Carter, B. Markey and G. R. Carter; Antimicrobial activity of plant extracts.; Clin. Vet. Microb.; 2004, 7, 543–549.
  36. Pavithra, P.S., N. Sreevidya and R.S. Verma. 2009. Antibacterial activity and chemical composition of essential oil of Pamburus missionis. J. Ethnopharm., 124(1): 151-153
  37. Peirano G: Multi resistant Enterobacteriaceae new threat to an old prob; expect review of anti-infective therapy. Expert Rev Anti Infect Ther 6, 657–669 (2008)
  38. Rahmani, R., Jouaidi, M., Bouajila, J., Debouba, M., 2020. African mustard (Brassica tour- nefortii) as source of nutrients and nutraceuticals properties. Journal of Food Sci- ence 85, 1856–1871.
  39. Sabo, A.V., Knezevic, P., 2019. Antimicrobial activity of Eucalyptus camaldulensis Dehn. Plant extracts and essential oils: a review. Industrial Crops and Products 132, 413– 429.
  40. Sharifi-Rad, J., Sureda, A., Tenore, G.C., Daglia, M., Sharifi-Rad, M., Valussi, M., Tundis, R., Sharifi-Rad, M., Loizzo, M.R., Ademiluyi, A.O., Sharifi-Rad, R., Ayatollahi, S.A., Iriti, M., 2017. Biological activities of essential oils: from plant chemoecology to traditional healing systems. Molecules 22, 70.
  41. Sharma A, Verma R, Ramteke P. Antibacterial activity of some medicinal plants used by tribals against UTI causing pathogens. World Appl Sci J. 2009;7:332–9.
  42. Sharmeen, J.B., Mahomoodally, F.M., Zengin, G., Maggi, F., 2021. Essential oils as natural sources of fragrance compounds for cosmetics and cosmeceuticals. Molecules 26, 666.
  43. Siddiqui, M.S., A.A. Memon, S. Memon and S.G. Baloch. 2017. Cuscutareflexa as a rich source of bioactive phenolic compounds. J. Herbs Spices Med. Plants., 23(2): 157-168.
  44. Sidhu, A.R., A. Basit, A. Hayat, S., Mangrio, S. Arain, T. Khalid, H.I. Mohamed and A. Elhakem. 2022. Quality characteristics, phytochemical analysis, and antioxidant of extract Cuscuta reflexa (Roxb.). Not. Bot. Hort.Agrobot. Cluj-Napoca., 50(3): 12691-12691
  45. Sidhu, A.R., A. Basit, A. Hayat, S., Mangrio, S. Arain, T. Khalid, H.I. Mohamed and A. Elhakem. 2022. Quality characteristics, phytochemical analysis, and antioxidant of extract Cuscuta reflexa (Roxb.). Not. Bot. Hort.Agrobot. Cluj-Napoca., 50(3): 12691-12691.
  46. Sulaiman, C.T., V.K. Gopalakrishnanand and I. Balachandran. 2014. Phenolic compounds and antioxidant properties of selected Acacia species. J. Biol. Act. Prod. Nat., 4(4): 316-324.
  47. The aqueous extract produced from kinos of Eucalyptus spp. were given to treat infections of the wounds and eyes -17)(( von Martius , et al , 2012)
  48. Von Martius, S.; Hammer, K.A, and Locher, C. (2012). Chemical Characteristics and Antimicrobial Effects of Some Eucalyptus kinos. J. Ethnopharmacol., 144(2):293-9.
  49. W. Wang, N. Wu, Y. G. Zu and Y. J. Fu; Antioxidative activity of Rosmarinus oficinalis L. essential oil compared to its main components; Food Chem.; 2008, 108(3), 1019–1022.
  50. Wigmore, S.M; Naiker, M. and Bean, D.C. (2016). Antimicrobial Activity of Extracts from Native Plants of Temperate Australia. Pharmacog. Commn., 6(2): 80-84.
  51. Yadav, R.N.S. and M. Agarwala. 2011. Phytochemical analysis of some medicinal plants. J. Phytol., 3(12): 10-14.
  52. Yik Ling Chew, Elaine Wan Ling Chan, Pei Ling Tan, Yau Yan Lim, Johnson Stanslas, Joo Kheng Goh. Assessment of phytochemical content, polyphenolic composition, antioxidant and antibacterial activities of Leguminosae medicinal plants in Peninsular Malaysia. BMC Complementary and Alternative Medicine 2011; 11: 1-10.

المؤلف

طلال طه علي

جامعة النور، كلية التقنيات الصحية والطبية، قسم التغذية، الموصل، العراق

المعرفات

معرف الكائن الرقمي DOI: 10.33899/berj.2026.Vol22.Iss2.61370

تنزيل هذا الملف
PDF (الإنجليزية)

الإحصائيات

طريقة الاقتباس

تقييم التأثيرات المضادة للبكتيريا لمستخلصات الكافور (Eucalyptus camaldulensis L.) ضد بعض البكتيريا الممرضة في المختبر والمركبات الفينولية بواسطة تقنية كروماتوغرافيا السائل عالي الأداء - كاشف المصفوفة الثنائية (HPLC-DAD) . (2026). مجلة ابحاث كلية التربية الاساسية, 22(2), 223-242. https://doi.org/10.33899/berj.2026.Vol22.Iss2.61370
حقوق الطبع والنشر والتراخيص
Creative Commons Licenseهذا العمل مرخص بموجب رخصة المشاع الإبداعي نسب المصنف 4.0 رخصة دولية.

طريقة الاقتباس